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SGK1

出典: フリー百科事典『ウィキペディア(Wikipedia)』
SGK1
PDBに登録されている構造
PDBオルソログ検索: RCSB PDBe PDBj
PDBのIDコード一覧

2R5T, 3HDM, 3HDN

識別子
記号SGK1, SGK, serum/glucocorticoid regulated kinase 1
外部IDOMIM: 602958 MGI: 1340062 HomoloGene: 48364 GeneCards: SGK1
遺伝子の位置 (ヒト)
6番染色体 (ヒト)
染色体6番染色体 (ヒト)[1]
6番染色体 (ヒト)
SGK1遺伝子の位置
SGK1遺伝子の位置
バンドデータ無し開始点134,169,248 bp[1]
終点134,318,112 bp[1]
遺伝子の位置 (マウス)
10番染色体 (マウス)
染色体10番染色体 (マウス)[2]
10番染色体 (マウス)
SGK1遺伝子の位置
SGK1遺伝子の位置
バンドデータ無し開始点21,758,083 bp[2]
終点21,875,802 bp[2]
RNA発現パターン
さらなる参照発現データ
遺伝子オントロジー
分子機能 トランスフェラーゼ活性
ヌクレオチド結合
protein kinase activity
sodium channel regulator activity
calcium channel regulator activity
キナーゼ活性
potassium channel regulator activity
血漿タンパク結合
protein serine/threonine/tyrosine kinase activity
chloride channel regulator activity
ATP binding
protein serine/threonine kinase activity
細胞の構成要素 endoplasmic reticulum membrane

細胞膜
小胞体
ミトコンドリア
細胞核
細胞質
細胞質基質
nuclear speck
生物学的プロセス regulation of apoptotic process
intracellular signal transduction
regulation of cell migration
positive regulation of transporter activity
リン酸化
sodium ion transport
cellular response to DNA damage stimulus
regulation of blood pressure
タンパク質リン酸化
イオン経膜輸送
regulation of cell population proliferation
regulation of DNA-binding transcription factor activity
regulation of cell growth
regulation of catalytic activity
renal sodium ion absorption
regulation of gastric acid secretion
アポトーシス
peptidyl-serine phosphorylation
長期記憶
neuron projection morphogenesis
出典:Amigo / QuickGO
オルソログ
ヒトマウス
Entrez
Ensembl
UniProt
RefSeq
(mRNA)

NM_001143676
NM_001143677
NM_001143678
NM_001291995
NM_005627

NM_001161845
NM_001161847
NM_001161848
NM_001161849
NM_001161850

NM_011361

RefSeq
(タンパク質)

NP_001137148
NP_001137149
NP_001137150
NP_001278924
NP_005618

NP_001155317
NP_001155319
NP_001155320
NP_001155321
NP_001155322

NP_035491

場所
(UCSC)
Chr 6: 134.17 – 134.32 MbChr 6: 21.76 – 21.88 Mb
PubMed検索[3][4]
ウィキデータ
閲覧/編集 ヒト閲覧/編集 マウス

SGK1(serum and glucocorticoid-regulated kinase 1)は、ヒトではSGK1遺伝子によってコードされる酵素セリン/スレオニンキナーゼ)である。

SGK1はセリン/スレオニンキナーゼの中でもSGKサブファミリーに属し、血清糖質コルチコイドを含むいくつかの刺激によって急速な転写の制御が行われる。SGK1はインスリン成長因子によって、PI3キナーゼPDPK1英語版mTORC2英語版を介して活性化される[5][6]。SGK1はいくつかの酵素や転写因子を調節し、輸送、ホルモンの放出、神経細胞の興奮、炎症、細胞増殖、アポトーシスの調節に寄与していることが示されている[5][6]。SGK1はさまざまなイオンチャネル輸送体Na+/K+-ATPアーゼの存在量や活性を増加させる。SGK1の発現は発生段階や、高血圧糖尿病性神経障害虚血外傷神経変性疾患などの病態によって調節されている証拠が蓄積している[7]

機能

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SGK1は細胞ストレス応答に重要な役割を果たすセリン/スレオニンキナーゼである。このキナーゼは特定のカリウムチャネルナトリウムチャネル塩化物チャネルを活性化し、細胞生存、神経興奮、腎臓でのナトリウムの排出に関与していることが示唆されている。

イオンチャネルとトランスポーターの調節

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SGK1は次に挙げるイオンチャネルを調節することが示されている。

次に挙げる輸送体やポンプもSGK1の影響を受ける。

細胞体積の調節

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SGK1は浸透圧による細胞収縮または等張性細胞収縮によってアップレギュレーションされる。SGK1依存的なカチオンチャネルの調節は細胞の体積の調節に寄与している可能性があるが、その調節機構や重要性は未だ確立されていない[21]。細胞へNa+の流入は細胞を脱分極し、並行してClの流入をもたらす。NaClの流入と浸透圧によって駆動される水の流入は細胞の体積を増加させる。SGK1は細胞の体積によって調節されるClチャネルClC2の活性を増加させることが示されている[13]。こうしたClチャネルの活性化はのCl流出と最終的にはK+の流出をもたらし、KClの喪失によって細胞の体積は減少する。こうした観察は細胞収縮によるSGK1のアップレギュレーションとは対照的であり、SGK1はむしろ細胞体積の減少に関与している可能性を示唆している[21]。SGK1は細胞体積の変化に対処する能力を増すことで細胞体積の維持に寄与している可能性もある[6][21]

脱水

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脳の水分状態は神経の機能に重要である。水分補給は神経細胞グリア細胞の体積に影響を与え、大脳の機能を変化させる。脱水はSGK1を含む広範囲の遺伝子の発現を変化させる。脱水時の脳の機能変化にはSGK1の影響を受ける機能が大きく寄与していることが示されている[5]

細胞増殖とアポトーシス

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SGK1はアポトーシスを阻害することが示されている。SGK1とSGK3英語版の持つ抗アポトーシス作用の一部はフォークヘッド転写因子のリン酸化によるものである[5]。また、増殖シグナルはSGK1を核内へ輸送し、SGK1はKv1.3を調節することで細胞増殖作用を示していることが示唆されている[5][15][17]。Kv1.3のチャネル活性のアップレギュレーションは成長因子の増殖作用に重要である可能性があり、IGF-1による細胞増殖はいくつかのKvチャネル(電位依存性カリウムチャネル)遮断薬によって妨げられる[17]

SGK1のノックアウトマウスの成長は見かけ上正常である[22]。そのため、SGK1は細胞増殖やアポトーシスに重要な要素ではないか、もしくはSGK1ノックアウトマウスでは関連するキナーゼがSGK1の機能を効果的に補っているかのいずれかである[5]

記憶形成

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SGK1は長期記憶の形成に重要な役割を果たすことが示唆されている[23]。野生型SGK1のトランスフェクションはラットの学習能力を改善する。一方、不活性型SGK1のトランスフェクションは空間記憶、恐怖条件付け、新奇物体認識の学習能力が低下する[5][6]

SGK1の記憶固定における役割にはグルタミン酸受容体も影響を与えている可能性がある。SGKのアイソフォームはAMPA受容体カイニン酸受容体をアップレギュレーションし、グルタミン酸の興奮作用を増強すると考えらえる[5]シナプス伝達と海馬の可塑性はどちらもカイニン酸受容体の影響を受ける。SGKの欠損はシナプス間隙からのグルタミン酸の除去を低下させ、グルタミン酸トランスポーターや受容体の機能や調節を変化させる。その結果、興奮毒性が増加し、最終的には細胞死が引き起こされる可能性がある[5][6][21]

長期増強

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SGKは海馬の神経細胞での長期増強と神経可塑性を促進することが示されている。海馬でのSGKのmRNAの発現はAMPA受容体によって増加する。AMPA受容体を介したシナプス伝達は長期増強の後期段階と密接に関係している[23]

転写

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ヒトのSGK1のアイソフォームは細胞の体積によって調節される遺伝子として同定されており、細胞収縮によって転写がアップレギュレーションされる。SGK1の転写産物レベルの調節は速く、SGK1のmRNAの出現と消失は20分以内に行われる[24]。SGK1の転写は血清や糖質コルチコイドによって増加し、転写の変化は細胞死の出現とも相関している[7]。SGK1の転写調節に関与するシグナル伝達分子としては、cAMPp53プロテインキナーゼCがある。SGK1の転写は細胞体積の変化に対する感受性があるため、脳でのSGK1の発現は脱水によってアップレギュレーションされる。

SGK1の発現は血清、IGF-1、酸化ストレスサイトカイン、低浸透圧、糖質コルチコイドを含む、多数の刺激によって制御されている[7]鉱質コルチコイド性腺刺激ホルモン線維芽細胞増殖因子血小板由来成長因子やその他のサイトカインもSGK1の転写を促進することが知られている[15][21]。さまざまな神経変性疾患におけるSGK1のアップレギュレーションはこうした刺激と直接的に相関しており、多くの神経変性疾患にはこうした刺激の変化が伴っている。

  • 糖質コルチコイド: SGK1の発現は主に糖質コルチコイドによって調節される[23]。動物では糖質コルチコイドがさまざまな程度の運動による記憶固定の増強に関与していることが示されている。糖質コルチコイドホルモンは重度のうつ病の患者でも常に増加している。慢性的な高濃度の糖質コルチコイドはグルココルチコイド受容体(GR)の活性化によって海馬の神経発生を弱める。SGK1は糖質コルチコイドが神経発生を低下させる下流の機構や、糖質コルチコイドの除去後もGRの機能を増強し維持する上流機構に関与する主要な酵素である[25]
  • 酸化ストレス: 酸化ストレスは神経変性過程の一般的な構成要素である。SGK1の発現はp38/MAPK依存性経路を介して誘導されることが示されており、SGK1はストレスの変化に対して迅速で一過的な応答を示す[26]
  • DNA損傷: SGK1の転写はDNA損傷によって、p53やERK1/2の活性化を介して促進される[15][21]

代謝

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SGK1はSGK3とともに、小腸でのナトリウム-グルコース輸送体英語版 SGLT1英語版によるグルコースの吸収を促進することが示されている。また、SGK1は脳、脂肪、骨格筋を含むいくつかの組織でも循環血流から細胞へのグルコースの取り込みを促進する[19]。SGK1はインスリンによる細胞へのグルコースの取り込みの促進にも重要な役割を果たしている。したがって、SGK1は尿細管でのNa+の輸送に関して鉱質コルチコイドとインスリンの作用を統合するだけでなく、グルコースの輸送にも同様に影響を与えている[21]

腎臓

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SGK1はアルドステロン、インスリン、IGF-1によるENaCの調節に影響を与えており、腎臓でのNa+の排出の調節に関与していることが示唆されている[27][28]抗利尿ホルモン(ADH)やインスリンによるENaCの活性化はSGK1に依存しているか、ADH/インスリンとSGK1によってそれぞれ誘導されて同じ標的に収束する非依存的な経路を反映したものであることが指摘されている[21]。腎臓でのENaCの機能や鉱質コルチコイドの作用は、部分的にはSGK1の存在に依存している。ある研究では、SGK1はインスリンによる腎臓でのNa+保持に重要な役割を果たしていることが明らかにされている[29]

SGK1は鉱質コルチコイドによって調節されるNaClの恒常性において、少なくとも2つの役割を担っている。NaClの摂取と腎臓でのNaClの再吸収の双方がSGK1に依存していることは、過剰なSGK1の活性によって経口でのNaClの吸収と腎臓でのNaClの保持が同時に促進され、動脈性高血圧が引き起こされうることを示唆している[21]

消化管

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SGK1は腸細胞英語版をはじめ、消化管で高度に発現している[21][30]。鉱質コルチコイドは小腸でのSGK1の発現の主要な刺激因子であることが示唆されている。腎臓での機能とは異なり、結腸でのENaCの調節はまだ十分には理解されてない。現時点では、SGK1は遠位結腸でのENaCの刺激には必要ではないと考えられている[21]

心臓と血管

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心臓はSGK1が高度に発現している多くの組織のうちの1つである。SGK1はNa+の取り込みと腎臓での排出の双方に影響を与えるため、血圧の調節はSGK1によって誘導される電解質の不均衡の影響を受ける可能性がある。インスリンによって活性化されたSGK1はNa+の再吸収と、その結果として血圧の上昇を引き起こす可能性がある[21][31]

SGK1は心周期のQT時間に影響を与えることが示されている。QT時間は左右の心室の電気的脱分極から再分極までの時間を表している。SGK1はQT時間を短縮させる可能性がある[21]。ヒトではSGK1の活性を高めると考えられる遺伝子バリアントはQT時間の短縮と関係している[32]

臨床的意義

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SGK1の機能獲得型変異は、心筋収縮の活動電位後に心臓細胞が再分極するまでの間隔であるQT時間の短縮をもたらす場合がある[33]。SGK1は心臓細胞のKvLQT1英語版チャネルとの相互作用によってこの作用を示し、KvLQT1がKCNE1英語版と複合体を形成している場合にチャネル活性を促進する。SGK1はPIKfyve英語版をリン酸化することで、このチャネルを介した緩徐活性型遅延整流性カリウム電流を増大させる。PIKfyveはPI(3,5)P2英語版を形成し、PI(3,5)P2は心臓の神経細胞膜へのKvLQT1/KCNE1チャネルのRAB11英語版依存的挿入を増加させる[34]。SGK1によるPIKfyveのリン酸化は、KvLQT1/KCNE1チャネル含有小胞のRAB11依存的なエキソサイトーシスを介してチャネル活性を調節する。SGK1は細胞内の輸送を変化させることで細胞膜へのKvLQT1/KCNE1チャネルの挿入を増加させ、神経細胞の緩徐活性型遅延整流性カリウム電流を増強させることができる[33]

神経疾患における役割

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SGK1の発現の2つの主要な要素である酸化ストレスと糖質コルチコイドの増加は、神経変性過程の一般的な要素である。SGK1は神経変性疾患の根底にある細胞死過程において重要な役割を果たしていることが研究から示唆されており、SGK1は神経保護作用を示すようである[7]

AMPA受容体とカイニン酸受容体はSGKのアイソフォームによって調節される[18]。AMPA受容体の活性化は虚血による細胞死に重要である[35]。SGK1依存的なAMP受容体とカイニン酸受容体の調節の異常は、筋萎縮性側索硬化症(ALS)や統合失調症てんかんの病理に関係している可能性がある[5]

グルタミン酸トランスポーターは細胞外空間からグルタミン酸を除去する。SGK1の欠損はグルタミン酸の作用を妨げる可能性があるが、それと同時にシナプス間隙からのグルタミン酸の除去も低下させる[18]。グルタミン酸は神経毒性を示す可能性があるため、グルタミン酸トランスポーターやグルタミン酸受容体の機能や調節の変化は興奮毒性を助長する可能性がある[21]

ハンチンチン

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SGK1はハンチンチンをリン酸化し、ハンチンチンの毒性に対抗することが発見されている[36]。一方で、SGK1のアップレギュレーションはパーキンソン病モデルでのドーパミン作動性細胞の死の出現とも一致している[21][37]。現時点では、SGK1は細胞死を防ぐのか駆動するのかは明らかではない。SGK1の過剰発現は重度の精神遅滞を示す疾患であるレット症候群でも観察されている[38]

SGK1は脳由来神経栄養因子(BDNF)シグナルの伝達にも関与していることが示唆されている。BDNFは神経の生存、可塑性英語版気分長期記憶に関与していることが知られている。SGK1は統合失調症うつ病アルツハイマー病におけるBDNFシグナル伝達に関与している可能性がある[5]。BDNFの濃度は抗うつ薬の投与や電気痙攣療法など、主要な精神病治療戦略の後に変化する[21]

他の神経疾患

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タウタンパク質はSGK1によってリン酸化される。アルツハイマー病ではタウの高リン酸化がみられるため、SGK1はアルツハイマー病に寄与している可能性がある[21]。また、クレアチントランスポーター(CreaT)に欠陥を抱える患者は精神遅滞を示すため、SGK1のCreaTをアップレギュレーションする能力には病理学的意義が存在する可能性がある[20][21]。SGK1の欠乏は同時に糖質コルチコイドシグナルの不十分な伝達を伴うため、SGK1は大うつ病性障害に関係している可能性が示唆されている。うつ病患者ではSGK1のmRNAのレベルが大幅に上昇していることが発見されている[25]

相互作用

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SGK1は次に挙げる因子と相互作用することが示されている。

出典

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  1. ^ a b c GRCh38: Ensembl release 89: ENSG00000118515 - Ensembl, May 2017
  2. ^ a b c GRCm38: Ensembl release 89: ENSMUSG00000019970 - Ensembl, May 2017
  3. ^ Human PubMed Reference:
  4. ^ Mouse PubMed Reference:
  5. ^ a b c d e f g h i j k Lang, Florian; Strutz-Seebohm, Nathalie; Seebohm, Guiscard; Lang, Undine E. (2010-09-15). “Significance of SGK1 in the regulation of neuronal function”. The Journal of Physiology 588 (Pt 18): 3349–3354. doi:10.1113/jphysiol.2010.190926. ISSN 1469-7793. PMC 2988501. PMID 20530112. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20530112. 
  6. ^ a b c d e f g h i Lang, Florian; Shumilina, Ekaterina (2013-01). “Regulation of ion channels by the serum- and glucocorticoid-inducible kinase SGK1”. FASEB journal: official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology 27 (1): 3–12. doi:10.1096/fj.12-218230. ISSN 1530-6860. PMID 23012321. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23012321. 
  7. ^ a b c d Schoenebeck, Bodo; Bader, Verian; Zhu, Xin Ran; Schmitz, Beate; Lübbert, Hermann; Stichel, Christine C. (2005-10). “Sgk1, a cell survival response in neurodegenerative diseases”. Molecular and Cellular Neurosciences 30 (2): 249–264. doi:10.1016/j.mcn.2005.07.017. ISSN 1044-7431. PMID 16125969. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16125969. 
  8. ^ Loffing, J.; Zecevic, M.; Féraille, E.; Kaissling, B.; Asher, C.; Rossier, B. C.; Firestone, G. L.; Pearce, D. et al. (2001-04). “Aldosterone induces rapid apical translocation of ENaC in early portion of renal collecting system: possible role of SGK”. American Journal of Physiology. Renal Physiology 280 (4): F675–682. doi:10.1152/ajprenal.2001.280.4.F675. ISSN 1931-857X. PMID 11249859. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11249859. 
  9. ^ Kuntzsch, Dana; Bergann, Theresa; Dames, Petra; Fromm, Anja; Fromm, Michael; Davis, Rohan A.; Melzig, Matthias F.; Schulzke, Joerg D. (2012). “The plant-derived glucocorticoid receptor agonist Endiandrin A acts as co-stimulator of colonic epithelial sodium channels (ENaC) via SGK-1 and MAPKs”. PloS One 7 (11): e49426. doi:10.1371/journal.pone.0049426. ISSN 1932-6203. PMC 3496671. PMID 23152905. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23152905. 
  10. ^ Wald, H.; Garty, H.; Palmer, L. G.; Popovtzer, M. M. (08 1998). “Differential regulation of ROMK expression in kidney cortex and medulla by aldosterone and potassium”. The American Journal of Physiology 275 (2): F239–245. doi:10.1152/ajprenal.1998.275.2.F239. ISSN 0002-9513. PMID 9691014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9691014. 
  11. ^ Palmada, Monica; Poppendieck, Susanne; Embark, Hamdy M.; van de Graaf, Stan F. J.; Boehmer, Christoph; Bindels, René J. M.; Lang, Florian (2005). “Requirement of PDZ domains for the stimulation of the epithelial Ca2+ channel TRPV5 by the NHE regulating factor NHERF2 and the serum and glucocorticoid inducible kinase SGK1”. Cellular Physiology and Biochemistry: International Journal of Experimental Cellular Physiology, Biochemistry, and Pharmacology 15 (1-4): 175–182. doi:10.1159/000083650. ISSN 1015-8987. PMID 15665527. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15665527. 
  12. ^ Jing, Haiyan; Na, Tao; Zhang, Wei; Wu, Guojin; Liu, Chuanyong; Peng, Ji-Bin (2011-01-28). “Concerted actions of NHERF2 and WNK4 in regulating TRPV5”. Biochemical and Biophysical Research Communications 404 (4): 979–984. doi:10.1016/j.bbrc.2010.12.095. ISSN 1090-2104. PMC 3031669. PMID 21187068. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21187068. 
  13. ^ a b c Palmada, Monica; Dieter, Michael; Boehmer, Christoph; Waldegger, Siegfried; Lang, Florian (2004-09-03). “Serum and glucocorticoid inducible kinases functionally regulate ClC-2 channels”. Biochemical and Biophysical Research Communications 321 (4): 1001–1006. doi:10.1016/j.bbrc.2004.07.064. ISSN 0006-291X. PMID 15358127. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15358127. 
  14. ^ Boehmer, Christoph; Wilhelm, Viktoria; Palmada, Monica; Wallisch, Sabine; Henke, Guido; Brinkmeier, Heinrich; Cohen, Philip; Pieske, Burkert et al. (2003-03-15). “Serum and glucocorticoid inducible kinases in the regulation of the cardiac sodium channel SCN5A”. Cardiovascular Research 57 (4): 1079–1084. doi:10.1016/s0008-6363(02)00837-4. ISSN 0008-6363. PMID 12650886. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12650886. 
  15. ^ a b c d e f Lang, Florian; Stournaras, Christos (2013-04). “Serum and glucocorticoid inducible kinase, metabolic syndrome, inflammation, and tumor growth”. Hormones (Athens, Greece) 12 (2): 160–171. doi:10.14310/horm.2002.1401. ISSN 2520-8721. PMID 23933686. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23933686. 
  16. ^ Takumi, T.; Ohkubo, H.; Nakanishi, S. (1988-11-18). “Cloning of a membrane protein that induces a slow voltage-gated potassium current”. Science (New York, N.Y.) 242 (4881): 1042–1045. doi:10.1126/science.3194754. ISSN 0036-8075. PMID 3194754. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/3194754. 
  17. ^ a b c Gamper, N.; Fillon, S.; Huber, S. M.; Feng, Y.; Kobayashi, T.; Cohen, P.; Lang, F. (2002-02). “IGF-1 up-regulates K+ channels via PI3-kinase, PDK1 and SGK1”. Pflugers Archiv: European Journal of Physiology 443 (4): 625–634. doi:10.1007/s00424-001-0741-5. ISSN 0031-6768. PMID 11907830. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11907830. 
  18. ^ a b c Strutz-Seebohm, Nathalie; Seebohm, Guiscard; Shumilina, Ekaterina; Mack, Andreas F.; Wagner, Hans-Joachim; Lampert, Angelika; Grahammer, Florian; Henke, Guido et al. (2005-06-01). “Glucocorticoid adrenal steroids and glucocorticoid-inducible kinase isoforms in the regulation of GluR6 expression”. The Journal of Physiology 565 (Pt 2): 391–401. doi:10.1113/jphysiol.2004.079624. ISSN 0022-3751. PMC 1464533. PMID 15774535. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15774535. 
  19. ^ a b Boini, Krishna M.; Hennige, Anita M.; Huang, Dan Yang; Friedrich, Björn; Palmada, Monica; Boehmer, Christoph; Grahammer, Florian; Artunc, Ferruh et al. (2006-07). “Serum- and glucocorticoid-inducible kinase 1 mediates salt sensitivity of glucose tolerance”. Diabetes 55 (7): 2059–2066. doi:10.2337/db05-1038. ISSN 0012-1797. PMID 16804076. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16804076. 
  20. ^ a b Shojaiefard, Manzar; Christie, David L.; Lang, Florian (2005-09-02). “Stimulation of the creatine transporter SLC6A8 by the protein kinases SGK1 and SGK3”. Biochemical and Biophysical Research Communications 334 (3): 742–746. doi:10.1016/j.bbrc.2005.06.164. ISSN 0006-291X. PMID 16036218. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16036218. 
  21. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r Lang, Florian; Böhmer, Christoph; Palmada, Monica; Seebohm, Guiscard; Strutz-Seebohm, Nathalie; Vallon, Volker (2006-10). “(Patho)physiological significance of the serum- and glucocorticoid-inducible kinase isoforms”. Physiological Reviews 86 (4): 1151–1178. doi:10.1152/physrev.00050.2005. ISSN 0031-9333. PMID 17015487. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17015487. 
  22. ^ Wulff, Peer; Vallon, Volker; Huang, Dan Yang; Völkl, Harald; Yu, Fang; Richter, Kerstin; Jansen, Martina; Schlünz, Michaela et al. (2002-11). “Impaired renal Na(+) retention in the sgk1-knockout mouse”. The Journal of Clinical Investigation 110 (9): 1263–1268. doi:10.1172/JCI15696. ISSN 0021-9738. PMC 151609. PMID 12417564. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12417564. 
  23. ^ a b c Ma, Yun L.; Tsai, Ming C.; Hsu, Wei L.; Lee, Eminy H. Y. (2006-03). “SGK protein kinase facilitates the expression of long-term potentiation in hippocampal neurons”. Learning & Memory (Cold Spring Harbor, N.Y.) 13 (2): 114–118. doi:10.1101/lm.179206. ISSN 1072-0502. PMID 16585788. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16585788. 
  24. ^ Waldegger, S.; Barth, P.; Raber, G.; Lang, F. (1997-04-29). “Cloning and characterization of a putative human serine/threonine protein kinase transcriptionally modified during anisotonic and isotonic alterations of cell volume”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 94 (9): 4440–4445. doi:10.1073/pnas.94.9.4440. ISSN 0027-8424. PMC 20741. PMID 9114008. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9114008. 
  25. ^ a b Anacker, Christoph; Cattaneo, Annamaria; Musaelyan, Ksenia; Zunszain, Patricia A.; Horowitz, Mark; Molteni, Raffaella; Luoni, Alessia; Calabrese, Francesca et al. (2013-05-21). “Role for the kinase SGK1 in stress, depression, and glucocorticoid effects on hippocampal neurogenesis”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 110 (21): 8708–8713. doi:10.1073/pnas.1300886110. ISSN 1091-6490. PMC 3666742. PMID 23650397. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23650397. 
  26. ^ Leong, Meredith L. L.; Maiyar, Anita C.; Kim, Brian; O'Keeffe, Bridget A.; Firestone, Gary L. (2003-02-21). “Expression of the serum- and glucocorticoid-inducible protein kinase, Sgk, is a cell survival response to multiple types of environmental stress stimuli in mammary epithelial cells”. The Journal of Biological Chemistry 278 (8): 5871–5882. doi:10.1074/jbc.M211649200. ISSN 0021-9258. PMID 12488318. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12488318. 
  27. ^ Wald, H.; Garty, H.; Palmer, L. G.; Popovtzer, M. M. (1998-08). “Differential regulation of ROMK expression in kidney cortex and medulla by aldosterone and potassium”. The American Journal of Physiology 275 (2): F239–245. doi:10.1152/ajprenal.1998.275.2.F239. ISSN 0002-9513. PMID 9691014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9691014. 
  28. ^ Faresse, Nourdine; Lagnaz, Dagmara; Debonneville, Anne; Ismailji, Adil; Maillard, Marc; Fejes-Toth, Geza; Náray-Fejes-Tóth, Aniko; Staub, Olivier (2012-04-15). “Inducible kidney-specific Sgk1 knockout mice show a salt-losing phenotype”. American Journal of Physiology. Renal Physiology 302 (8): F977–985. doi:10.1152/ajprenal.00535.2011. ISSN 1522-1466. PMID 22301619. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22301619. 
  29. ^ Huang, Dan Yang; Boini, Krishna M.; Friedrich, Björn; Metzger, Marco; Just, Lothar; Osswald, Hartmut; Wulff, Peer; Kuhl, Dietmar et al. (2006-04). “Blunted hypertensive effect of combined fructose and high-salt diet in gene-targeted mice lacking functional serum- and glucocorticoid-inducible kinase SGK1”. American Journal of Physiology. Regulatory, Integrative and Comparative Physiology 290 (4): R935–944. doi:10.1152/ajpregu.00382.2005. ISSN 0363-6119. PMID 16284089. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16284089. 
  30. ^ Coric, Tatjana; Hernandez, Nelmary; Alvarez de la Rosa, Diego; Shao, Deren; Wang, Tong; Canessa, Cecilia M. (2004-04). “Expression of ENaC and serum- and glucocorticoid-induced kinase 1 in the rat intestinal epithelium”. American Journal of Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology 286 (4): G663–670. doi:10.1152/ajpgi.00364.2003. ISSN 0193-1857. PMID 14630642. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14630642. 
  31. ^ Das, Saumya; Aiba, Takeshi; Rosenberg, Michael; Hessler, Katherine; Xiao, Chunyang; Quintero, Pablo A.; Ottaviano, Filomena G.; Knight, Ashley C. et al. (2012-10-30). “Pathological role of serum- and glucocorticoid-regulated kinase 1 in adverse ventricular remodeling”. Circulation 126 (18): 2208–2219. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.112.115592. ISSN 1524-4539. PMC 3484211. PMID 23019294. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23019294. 
  32. ^ Busjahn, Andreas; Seebohm, Guiscard; Maier, Gottlieb; Toliat, Mohammad Reza; Nürnberg, Peter; Aydin, Atakan; Luft, Friedrich C.; Lang, Florian (2004). “Association of the serum and glucocorticoid regulated kinase (sgk1) gene with QT interval”. Cellular Physiology and Biochemistry: International Journal of Experimental Cellular Physiology, Biochemistry, and Pharmacology 14 (3): 135–142. doi:10.1159/000078105. ISSN 1015-8987. PMID 15107590. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15107590. 
  33. ^ a b “Regulation of endocytic recycling of KCNQ1/KCNE1 potassium channels”. Circulation Research 100 (5): 686–692. (Mar 2007). doi:10.1161/01.RES.0000260250.83824.8f. PMID 17293474. 
  34. ^ “Long QT syndrome-associated mutations in KCNQ1 and KCNE1 subunits disrupt normal endosomal recycling of IKs channels”. Circulation Research 103 (12): 1451–1457. (Dec 2008). doi:10.1161/CIRCRESAHA.108.177360. PMID 19008479. 
  35. ^ Pellegrini-Giampietro, D. E.; Bennett, M. V.; Zukin, R. S. (1992-09-14). “Are Ca(2+)-permeable kainate/AMPA receptors more abundant in immature brain?”. Neuroscience Letters 144 (1-2): 65–69. doi:10.1016/0304-3940(92)90717-l. ISSN 0304-3940. PMID 1331916. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1331916. 
  36. ^ Rangone, Hélène; Poizat, Ghislaine; Troncoso, Juan; Ross, Christopher A.; MacDonald, Marcy E.; Saudou, Frédéric; Humbert, Sandrine (2004-01). “The serum- and glucocorticoid-induced kinase SGK inhibits mutant huntingtin-induced toxicity by phosphorylating serine 421 of huntingtin”. The European Journal of Neuroscience 19 (2): 273–279. doi:10.1111/j.0953-816x.2003.03131.x. ISSN 0953-816X. PMID 14725621. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14725621. 
  37. ^ Roux, Jean-Christophe; Zala, Diana; Panayotis, Nicolas; Borges-Correia, Ana; Saudou, Frédéric; Villard, Laurent (2012-02). “Modification of Mecp2 dosage alters axonal transport through the Huntingtin/Hap1 pathway”. Neurobiology of Disease 45 (2): 786–795. doi:10.1016/j.nbd.2011.11.002. ISSN 1095-953X. PMID 22127389. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22127389. 
  38. ^ Nuber, Ulrike A.; Kriaucionis, Skirmantas; Roloff, Tim C.; Guy, Jacky; Selfridge, Jim; Steinhoff, Christine; Schulz, Ralph; Lipkowitz, Bettina et al. (2005-08-01). “Up-regulation of glucocorticoid-regulated genes in a mouse model of Rett syndrome”. Human Molecular Genetics 14 (15): 2247–2256. doi:10.1093/hmg/ddi229. ISSN 0964-6906. PMID 16002417. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16002417. 
  39. ^ “Importin-alpha mediates the regulated nuclear targeting of serum- and glucocorticoid-inducible protein kinase (Sgk) by recognition of a nuclear localization signal in the kinase central domain”. Molecular Biology of the Cell 14 (3): 1221–39. (Mar 2003). doi:10.1091/mbc.E02-03-0170. PMC 151592. PMID 12631736. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC151592/. 
  40. ^ “BMK1 mediates growth factor-induced cell proliferation through direct cellular activation of serum and glucocorticoid-inducible kinase”. The Journal of Biological Chemistry 276 (12): 8631–4. (Mar 2001). doi:10.1074/jbc.C000838200. PMID 11254654. 
  41. ^ “Characterization of the interactions between Nedd4-2, ENaC, and sgk-1 using surface plasmon resonance”. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes 1612 (1): 59–64. (May 2003). doi:10.1016/s0005-2736(03)00083-x. PMID 12729930. 
  42. ^ “Serum and glucocorticoid-regulated kinase modulates Nedd4-2-mediated inhibition of the epithelial Na+ channel”. The Journal of Biological Chemistry 277 (1): 5–8. (Jan 2002). doi:10.1074/jbc.C100623200. PMID 11696533. 
  43. ^ a b “The Na(+)/H(+) exchanger regulatory factor 2 mediates phosphorylation of serum- and glucocorticoid-induced protein kinase 1 by 3-phosphoinositide-dependent protein kinase 1”. Biochemical and Biophysical Research Communications 298 (2): 207–15. (Oct 2002). doi:10.1016/s0006-291x(02)02428-2. PMID 12387817. 
  44. ^ “Serum and glucocorticoid-inducible kinase (SGK) is a target of the PI 3-kinase-stimulated signaling pathway”. The EMBO Journal 18 (11): 3024–33. (Jun 1999). doi:10.1093/emboj/18.11.3024. PMC 1171384. PMID 10357815. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1171384/. 
  45. ^ “Glucocorticoid activation of Na(+)/H(+) exchanger isoform 3 revisited. The roles of SGK1 and NHERF2”. The Journal of Biological Chemistry 277 (10): 7676–83. (Mar 2002). doi:10.1074/jbc.M107768200. PMID 11751930. 

外部リンク

[編集]
  • Overview of all the structural information available in the PDB for UniProt: O00141 (Serine/threonine-protein kinase Sgk1) at the PDBe-KB.